Por Quistián García Hylary
Es una técnica que permite evaluar bacterias
heterotróficas, aerobias totales (BAT), bacterias reductoras de sulfato (BRS),
anaerobias heterotróficas totales (BAnT). La técnica de dilución consiste en
inocular una serie de frascos tipo antibiótico que contienen 9 mililitros del
medio de cultivo apropiado según el tipo de bacteria que se quiere evaluar.
Se obtiene un mililitro de la muestra usando
una jeringa descartable, estéril de 1 o 2 mililitros, de capacidad. Se inocula
el primer frasco, sin retirar la aguja del mismo, se invierte y se retira 1
mililitro que se inocula en el 2do frasco.
Con una nueva jeringa se retira 1 ml del
frasco no. 2, previamente agitado y se inocula el frasco No. 3, y así
sucesivamente utilizando una nueva jeringa para cada frasco.
Si no se conoce información previa sobre la
cantidad de bacterias/ml dela muestra diluir suelen sembrarse 6 frascos. La
manifestación del crecimiento de bacteriano de observa por la turbidez del
medio de cultivo que se compara por transparencia con un frasco sin inocular en
el caso de bacterias aerobias y anaerobias totales, en el caso de bacterias
reductoras de sulfato se debe observar un ennegrecimiento del frasco.
Una vez inoculados los frascos se incuban
durante 7 días o 14 días a ±5ºC respecto a la temperatura de la muestra,
efectuando lecturas diarias para observar aquellos frascos que manifiestan
desarrollo positivo. Para calcular la densidad bacteriana se tienen en cuenta
los frascos que manifiesten alguna modificación como consecuencia del
crecimiento bacteriano.
Hay una variedad de acontecimientos que
interfieren con la interpretación de resultados obtenidos utilizando las
diluciones seriadas. Algunos de los más comunes son:
·
Todos los frascos muestran crecimiento. Si esto sucede,
no es posible estimar la población.
· Un frasco no denota crecimiento y el resto sí. Es decir,
hay un salto en los frascos positivos. Este salto debe ser anotado y se informara
de la concentración bacteriana correspondiente al frasco de mayor numeración
que resulto positivo.
Por Ramirez
Jessica
Mediante el uso de esta
técnica de simple ejecución y fácil interpretación, se pueden evaluar diferentes
grupos bacterianos según el medio de cultivo que contenga el frasco.
Es aplicable para evaluar bacterias heterotróficas, aerobias totales (BAT), bacterias reductoras de sulfato (BRS), anaerobias heterotróficas totales (BAnT), etc.
Esta técnica está recomendada por el Instituto Americano del Petróleo (API) para evaluar calidad biológica en aguas de inyección en recuperación secundaria y también es ampliamente usada en evaluación de problemas microbiológicos en aguas de refrigeración.
Es aplicable para evaluar bacterias heterotróficas, aerobias totales (BAT), bacterias reductoras de sulfato (BRS), anaerobias heterotróficas totales (BAnT), etc.
Esta técnica está recomendada por el Instituto Americano del Petróleo (API) para evaluar calidad biológica en aguas de inyección en recuperación secundaria y también es ampliamente usada en evaluación de problemas microbiológicos en aguas de refrigeración.
Procedimiento.
La técnica de dilución por extinción consiste en inocular una serie de frascos tipo antibiótico que contienen 9 ml del medio de cultivo apropiado según el tipo de bacteria que se quiera evaluar.
La técnica de dilución por extinción consiste en inocular una serie de frascos tipo antibiótico que contienen 9 ml del medio de cultivo apropiado según el tipo de bacteria que se quiera evaluar.
Se
obtiene 1 ml de la muestra usando una jeringa descartable, estéril, de 1 o 2 ml
de capacidad.
Se
inocula el primer frasco, sin retirar la aguja se agita el mismo, se invierte y
se retira 1 ml que se inocula en el 2° frasco.
Con
una nueva jeringa, se retira 1 ml del frasco N° 2, previamente agitado, y se
inocula el frasco N° 3 y así sucesivamente, utilizando una nueva jeringa para
cada frasco.
Si
no existe información previa sobre cantidad de bacterias/mL de la muestra
suelen sembrarse 6 frascos.
La
manifestación de crecimiento bacteriano se observa por la turbidez del medio de
cultivo que se compara por transparencia con un frasco sin inocular en el caso
de bacterias aerobias totales y bacterias anaerobias totales; en el caso de
bacterias reductoras de sulfatos se debe observar un ennegrecimiento del
frasco.
Una
vez inoculados los frascos y rotulados convenientemente, se incuban durante 7
días (BAT, BAT-RF, MFT) o 14 días (BPA) en estufa de cultivo a ±5ºC respecto de
la temperatura del agua muestreada, efectuando lecturas diarias para observar
aquellos frascos que manifiestan desarrollo positivo. Para el caso de los
medios BRS y BRH, el plazo de lectura es de 28 días máximo, realizando también
lecturas periódicas.
Cálculos
de densidad bacteriana.
Se
tienen en cuenta los frascos que manifiesten alguna modificación como
consecuencia del crecimiento bacteriano; esta modificación puede ser turbidez,
cambio de color, ennegrecimiento, etc. Por ejemplo: si se usó el medio BAT-RF y
se observa turbidez y/o cambio de color hasta el frasco N° 4 el resultado sería
1000-10000 bact/mL o exponencialmente 103 104 bact/mL. Habitualmente se informa
104 bact/mL.
Problemas
comunes en la interpretación del crecimiento bacteriano cuando se utiliza la
técnica de dilución por extinción.
Hay una variedad de
acontecimientos que interfieren con la interpretación de resultados obtenidos
utilizando las diluciones seriadas. Algunos de los más comunes son:
·
Todos los
frascos muestran crecimiento.
Si esto sucede, no es
posible estimar la población, por ejemplo si en una serie de 6 frascos
inoculados todos se manifiestan positivos se debe informar:106 bact/mL. Para el
próximo análisis de esa muestra habría que considerar el empleo de 8 o 9
frascos.
Un frasco no denota crecimiento y el resto sí.
Un frasco no denota crecimiento y el resto sí.
·
Algunas veces
uno de los frascos permanece sin cambios mientras que los ubicados anterior y
posteriormente en la serie inoculada muestran positividad. Es decir, hay un
“salto” en los frascos positivos. Este “salto” debe ser anotado y se informará
la concentración bacteriana correspondiente al frasco de mayor numeración que
resultó positivo. Por ejemplo: El crecimiento positivo se observa en los
frascos 1, 2 y 4 mientras los frascos 3, 5 y 6 permanecen sin modificaciones,
todo después de incubar a la temperatura y tiempo incubado. Hay varias
explicaciones posibles para esto, incluyendo una contaminación accidental del
frasco 4. Por lo tanto, nunca se puede saber que ocurrió realmente y hay que
proceder de la forma más simple ante una situación dudosa.
En
el ejemplo anterior, si se confía razonablemente en que los frascos fueron
rotulados apropiadamente con su número de orden, el informe será 104 bact/mL
anotando el frasco que “saltó”.
·
Frascos que se
manifiestan positivos inmediatamente. Si el primer frasco con un medio de
cultivo para BRS se ennegrece dentro de las 2 horas de haber sido inoculado con
1 mL de agua muestra, este ennegrecimiento no es producto del crecimiento
bacteriano dentro del frasco; el color negro es debido al SFe proveniente de
altos niveles de SH2 en la muestra de agua que reaccionó con el Fe disuelto en
el caldo de cultivo. En estos casos se pueden seguir dos cursos de acción:
1)
Proceder con las diluciones seriadas. Los frascos 2 a 6 permanecerán
generalmente sin cambios y pueden ser usados para detectar el crecimiento
bacteriano incubándolos a temperatura y tiempo adecuado y observando
ennegrecimiento en los mismos transcurrido el tiempo de incubación.
2)
Colectar por lo menos 50 mL de agua en un frasco estéril y agregarle una
tableta de Alka-Seltzer que puede despojar la mayoría del SH2 de la muestra.
Cuando la tableta cesa de burbujear, retirar 1 mL de agua con jeringa estéril y
llevar a cabo el procedimiento habitual de las diluciones seriadas.
Por
Ramos Michelle
Las bacterias, son las más peque; as y numerosos
microorganismos que se encuentran en el suelo, el número de bacterias en el
suelo pueden o salar desde o menos a varios millones de estimaciones se
realizan en cultivos o mediante examen microscópico. La técnica de dilución en
placa se usa más frecuentemente.
El procedimiento para realizar esta técnica:
·
Inocular una serie de frascos tipo
antibiótico que contiene 9 ml de medio de cultivo apropiado según el tipo de
bacteria que se quiera evaluar.
·
Se inocula el primer frasco, retirar la
aguja se agita el mismo se invierte, se retira un ml que se inocula en el
segundo frasco
·
Con una nueva jeringa, se retira un ml
de frasco número 2, previamente agitado, y se inocula el frasco no 3 y haci
sucesivamente, utilizando una nueva jeringa por cada frasco
Cálculos
de densidad bacteriana
Se tiene en cuenta los frascos que manifiestan
alguna modificación como consecuencia del crecimiento bacteriano: esta
modificación puede ser turbidez cambio de color, en negrecimiento, etc.
Por ejemplo: si se usó el medio BAT –RF y se observa
turbidez y lo cambio de color hasta el frasco numero 4 el resultado seria
1000-10;000bacte/ml o exponencialmente 103-104bact/ml habitualmente se informa
104 bact/ml.
Por
Rangel Hugo
Mediante
el uso de esta técnica de simple ejecución y fácil interpretación, se pueden evaluar
diferentes grupos bacterianos según el medio de cultivo que contenga el frasco.
Es
aplicable para evaluar bacterias heterotróficas, aerobias totales (BAT),
bacterias reductoras de sulfato (BRS), anaerobias heterotróficas totales
(BAnT), etc.
Esta
técnica está recomendada por el Instituto Americano del Petróleo (API) para
evaluar calidad biológica en aguas de inyección en recuperación secundaria y
también es ampliamente usada en evaluación de problemas microbiológicos en
aguas de refrigeración.
Procedimiento.
• La técnica de dilución por extinción
consiste en inocular una serie de frascos tipo antibiótico que contienen 9 ml
del medio de cultivo apropiado según el tipo de bacteria que se quiera evaluar.
• Se obtiene 1 ml de la muestra usando
una jeringa descartable, estéril, de 1 o 2 ml de capacidad.
• Se inocula el primer frasco, sin
retirar la aguja se agita el mismo, se invierte y se retira 1 ml que se inocula
en el 2° frasco.
• Con una nueva jeringa, se retira 1 ml
del frasco N° 2, previamente agitado, y se inocula el frasco N° 3 y así
sucesivamente, utilizando una nueva jeringa para cada frasco
Si
no existe información previa sobre cantidad de bacterias/mL de la muestra
suelen sembrarse 6 frascos.
• La manifestación de crecimiento
bacteriano se observa por la turbidez del medio de cultivo que se compara por
transparencia con un frasco sin inocular en el caso de bacterias aerobias
totales y bacterias anaerobias totales; en el caso de bacterias reductoras de
sulfatos se debe observar un ennegrecimiento del frasco.
• Una vez inoculados los frascos y
rotulados convenientemente, se incuban durante 7 días (BAT, BAT-RF, MFT) o 14
días (BPA) en estufa de cultivo a ±5ºC respecto de la temperatura del agua
muestreada, efectuando lecturas diarias para observar aquellos frascos que
manifiestan desarrollo positivo. Para el caso de los medios BRS y BRH, el plazo
de lectura es de 28 días máximo, realizando también lecturas periódicas..
• Cálculos de densidad bacteriana.
• Se tienen en cuenta los frascos que
manifiesten alguna modificación como consecuencia del crecimiento bacteriano;
esta modificación puede ser turbidez, cambio de color, ennegrecimiento, etc.
Por Rascon Lizeth
Mediante
el uso de esta técnica de simple ejecución y fácil interpretación, se pueden
evaluar diferentes grupos bacterianos según el medio de cultivo que contenga el
frasco.
Es
aplicable para evaluar bacterias heterotróficas, aerobias totales (BAT),
bacterias reductoras de sulfato (BRS), anaerobias heterotróficas totales (BAnT),
etc.
Procedimiento.
La técnica de dilución por extinción consiste en inocular una serie de frascos tipo antibiótico que contienen 9 ml del medio de cultivo apropiado según el tipo de bacteria que se quiera evaluar.
La técnica de dilución por extinción consiste en inocular una serie de frascos tipo antibiótico que contienen 9 ml del medio de cultivo apropiado según el tipo de bacteria que se quiera evaluar.
Se
obtiene 1 ml de la muestra usando una jeringa descartable, estéril, de 1 o 2 ml
de capacidad.
Se inocula el primer frasco, sin retirar la aguja se agita el mismo, se invierte y se retira 1 ml que se inocula en el 2° frasco.
Se inocula el primer frasco, sin retirar la aguja se agita el mismo, se invierte y se retira 1 ml que se inocula en el 2° frasco.
Con
una nueva jeringa, se retira 1 ml del frasco N° 2, previamente agitado, y se
inocula el frasco N° 3 y así sucesivamente, utilizando una nueva jeringa para
cada frasco.
A
manifestación de crecimiento bacteriano se observa por la turbidez del medio de
cultivo que se compara por transparencia con un frasco sin inocular en el caso
de bacterias aerobias totales y bacterias anaerobias totales; en el caso de
bacterias reductoras de sulfatos se debe observar un ennegrecimiento del
frasco.
Una vez inoculados los frascos y rotulados convenientemente, se incuban durante 7 días (BAT, BAT-RF, MFT) o 14 días (BPA) en estufa de cultivo a ±5ºC respecto de la temperatura del agua muestreada, efectuando lecturas diarias para observar aquellos frascos que manifiestan desarrollo positivo. Para el caso de los medios BRS y BRH, el plazo de lectura es de 28 días máximo, realizando también lecturas periódicas..
Una vez inoculados los frascos y rotulados convenientemente, se incuban durante 7 días (BAT, BAT-RF, MFT) o 14 días (BPA) en estufa de cultivo a ±5ºC respecto de la temperatura del agua muestreada, efectuando lecturas diarias para observar aquellos frascos que manifiestan desarrollo positivo. Para el caso de los medios BRS y BRH, el plazo de lectura es de 28 días máximo, realizando también lecturas periódicas..
Cálculos
de densidad bacteriana.
Se
tienen en cuenta los frascos que manifiesten alguna modificación como
consecuencia del crecimiento bacteriano; esta modificación puede ser turbidez,
cambio de color, ennegrecimiento, etc.
Por ejemplo: si se usó el medio BAT-RF y se observa turbidez y/o cambio de color hasta el frasco N° 4 el resultado sería 1000-10000 bact/mL o exponencialmente 103-104 bact/mL.. Habitualmente se informa 104 bact/mL.
Por ejemplo: si se usó el medio BAT-RF y se observa turbidez y/o cambio de color hasta el frasco N° 4 el resultado sería 1000-10000 bact/mL o exponencialmente 103-104 bact/mL.. Habitualmente se informa 104 bact/mL.
Por Luis Diego Reyes Marcial
Técnica de recuento por dilución
Mediante el uso de esta técnica
de simple ejecución y fácil interpretación, se pueden evaluar diferentes grupos
bacterianos según el medio de cultivo que contenga el frasco. Es aplicable para
evaluar bacterias heterotróficas, aerobias totales, bacterias reductoras de
sulfato, anaerobias heterotróficas totales, etc.
Procedimiento.
La técnica de dilución por
extinción consiste en inocular una serie de frascos tipo antibiótico que contienen
9 ml del medio de cultivo apropiado según el tipo de bacteria que se quiera
evaluar.
- Se obtiene 1 ml de la muestra usando una jeringa descartable, estéril, de 1 o 2 ml de capacidad.
- Se inocula el primer frasco, sin retirar la aguja se agita el mismo, se invierte y se retira 1 ml que se inocula en el 2° frasco.
- Con una nueva jeringa, se retira 1 ml del frasco N° 2, previamente agitado, y se inocula el frasco N° 3 y así sucesivamente, utilizando una nueva jeringa para cada frasco.
Si no existe información previa
sobre cantidad de bacterias/ml de la muestra suelen sembrarse 6 frascos. La
manifestación de crecimiento bacteriano se observa por la turbidez del medio de
cultivo que se compara por transparencia con un frasco sin inocular en el caso
de bacterias aerobias totales y bacterias anaerobias totales; en el caso de
bacterias reductoras de sulfatos se debe observar un ennegrecimiento del
frasco.
Una vez inoculados los frascos y
rotulados convenientemente, se incuban durante 7 días (BAT, BAT-RF, MFT) o 14
días (BPA) en estufa de cultivo a ±5ºC respecto de la temperatura del agua
muestreada, efectuando lecturas diarias para observar aquellos frascos que
manifiestan desarrollo positivo. Para el caso de los medios BRS y BRH, el plazo
de lectura es de 28 días máximo, realizando también lecturas periódicas.
Cálculos.
Se tienen en cuenta los frascos
que manifiesten alguna modificación como consecuencia del crecimiento
bacteriano; esta modificación puede ser turbidez, cambio de color,
ennegrecimiento, etc. Por ejemplo: si se usó el medio BAT-RF y se observa
turbidez y/o cambio de color hasta el frasco N° 4 el resultado sería 1000-10000
bact/ml o exponencialmente 103-104 bact/ml. Habitualmente se informa 104
bact/ml.
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